Reguladores de Crecimiento (BAP y ANA) en la Propagación in vitro de Queñoa (Polylepis rugulosa Bitter)

Carmen Mollohuanca Ccuno, Luis Mayta Anco, Roxana Bardales Alvarez

Resumen


Dentro del marco del Programa de forestación e investigación forestal de Sociedad Minera Cerro Verde se realizó el presente estudio, con la finalidad de establecer un protocolo de propagación vegetativa mediante la técnica de propagación in vitro de yemas de queñoa (Polylepis rugulosa Bitter) para su conservación, por ser una especie forestal en peligro, para lo cual se realizó el cultivo con diferentes concentraciones de auxina y citoquinina en la fase de multiplicación in vitro, pasando por la fase de establecimiento la cual fue superada con un alto porcentaje de sobrevivencia siguiendo el protocolo de esterilización con etanol al 96% e hipoclorito de sodio al 2,5% las cuales fueron cultivadas en medio Murashige & Skoog. En la fase de multiplicación se usaron 3 concentraciones de ANA y 5 concentraciones de BAP, siendo el de mejor respuesta la combinación de 0,25 µM ANA + 2 µM BAP con 15.8 brotes, los mismos que alcanzaron 9 mm de tamaño, 2,7 hojas en promedio por explante y no presentaron formación de callo, posteriormente se realizó dos subcultivos de este tratamiento cuya tasa de multiplicación resultó 1:17 brotes en 30 días.


Texto completo:

PDF

Referencias


Abdelnour-Esquivel, A., & Muñoz, A. (2005). Micropropagación de teca (Tectona grandis Lf). Kurú: Revista Forestal (Costa Rica) 2(5), 2005.

Ames-Martínez, F. N., Quispe Melgar, H. R., Zúñiga López, D. G., Segovia Salcedo, M. C., & Kessler, M. (2019). Bosques de Polylepis: Biodiversidad en la región central del Perú. Universidad Continental.

Azofeifa, Á. (2009). Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía mesoamericana, 20(1), 153-175.

Borges, G. M., Estrada, A. E., Pérez, R. I., Meneses, R. S. (2009). Uso de distintos tratamientos de desinfección en el cultivo in vitro de Discorea alata L. clon caraqueño. Cuba.

Canales, Á., & Huarasa, Y. R. (2020). Poder germinativo de Polylepis incana con aplicación de diferentes tratamientos de agua. Revista Cubana de Ciencias Forestales, 8(3), 495-506.

Cancino-Escalante, G. O., García, E. Q., Villamizar, C. E., & Carvajal, C. D. (2015). Propagación in vitro de materiales seleccionados de Rubus glaucus Benth. (mora de Castilla) en la provincia de Pamplona, región nororiental de Colombia. Revista Colombiana de Biotecnología, 17(2), 7-15.

Castellanos, O., Rodríguez, A., Rodríguez, J., y Rodríguez, B. (2006). Organogénesis indirecta y enraizamiento in vitro de Paulownia elongata. e-Gnosis, 4.

Cob, J., Ríos, D., Sabja, A., Cartes, P., & Sánchez, M. (2016). Organogénesis directa para la propagación in vitro de Quillaja saponaria Molina en Sudamérica Austral. Revista mexicana de ciencias forestales, 7(34), 57-68.

Colmenares, M., & Giménez, C. (2003). Multiplicación in vitro de Musa spp. mediante sistema de inmersión temporal. Revista de la Facultad de Agronomía, 20(4), 468-477.

Concepción, O., Nápoles, L., Pérez, A. T., Peralta, N., Hernández, M., & Trujillo, R. (2005). Efecto de tres antioxidantes en el cultivo in vitro de ápices de guayaba (Psidium guajava L.). Relación entre el origen del explante y el contenido de compuestos fenólicos. Cultivos tropicales, 26(1), 33-39.

Gutierrez-Rosati, A.; Gonzales, P. (2019). Reguladores de crecimiento en el cultivo in vitro de tres cultivares portainjertos de vid (Vitis vinifera L.) para su uso en la industria del pisco. Scientia Agropecuaria, 10(4), 461-468.

Jacinto, M. (2018). Evaluación de tres niveles de auxinas y citoquininas para la obtención de plantas madre de rosa (Rosa sp.) variedad ‘Freedom’ en condiciones in vitro. Apthapi, 4(2), 1073-1081.

Jones, F., & Flores-Mora, D. M. (2007). Establecimiento in vitro y pruebas preliminares de micropropagación en medio semisólido y líquido de frambuesa (Rubus idaeus L.). Revista Tecnología En Marcha, 20(3), 46.

Mamani, M. S. (2018). Diversidad genética de poblaciones de Polylepis canoi W. Mendoza y Polylepis rodolfo-vasquezii L. Valenzuela & L. Villalba mediante el uso de microsatélites (SSR) en la región Junín.

Mamani, B., Rocabado Koya, P., & Rey Ortíz, L. (2015). Establecimiento y multiplicación in vitro de Polylepis pepei (No. CIDAB-S531-I51r-5/2015). Instituto Nacional de Innovación Agropecuaria y Forestal (Bolivia).

Mamani, B., & Murillo, R. A. (2020). Micropropa-gación de dos variedades de frutilla (Fragaria Ananassa Duch.) En diferentes medios de cultivo. Revista de Investigación e Innovación Agropecuaria y de Recursos Naturales, 7(1), 69-78.

Martínez, R. M., Tuya, L. C., Martínez, M., Pérez, A., & Cánovas, A. M. (2009). El coeficiente de correlación de los rangos de Spearman caracterización. Revista Habanera de Ciencias Médicas, 8(2), 0-0.

Martínez-Cruz, N. S., Arévalo-Niño, K., Verde-Star, M. J., Oranday-Cárdenas, A., Rivas-Morales, C., Treviño-Neávez, J., & Morales-Rubio, M. E. (2013). Germinación in vitro e inducción de callo en Rubus adenotrichus Schltdl. Polibotánica, (35), 99-107.

Medina, M., Mosquera, H., & Aguilar, C. (2014). Micropropagación clonal y enraizamiento ex vitro de tres cultivares de piña Ananas comosus (L. Merr.) del Chocó, Colombia. Revista Biodiversidad Neotropical, 4(2), 133-140.

Méndez-Álvarez, D., & Abdelnour-Esquivel, A. (2014). Establecimiento in vitro de Terminalia amazonia (Gmel.) Excell. Revista Forestal Mesoamericana Kurú, 11(27), 7-21.

Mendoza, W., & Cano, A. (2011). Diversidad del género Polylepis (Rosaceae, Sanguisorbeae) en los Andes peruanos. Revista peruana de biología, 18(2), 197-200.

Núñez, J. E. N., Quiala, E., de Feria, M., Mestanza, S., & Teanga, S. (2017). Propagación in vitro de Caesalpinia spinosa (Mol.) O. Kuntz a partir de yemas axilares de árboles plus seleccionados. Biotecnología Vegetal, 17(2).

Pierik, R. (1997). In vitro culture of higher plants. Springer science & business media.

Ríos, C. S. S., Rodewald, A. D., & Morales, L. V. (2018). Ecología y conservación de las aves asociadas con Polylepis: ¿qué sabemos de esta comunidad cada vez más vulnerable? Ecología Austral, 28(1-bis), 216-228.

Roca, W. M., & Mroginski, L. (1991). Cultivo de tejidos en la Agricultura: Fundamentos y aplicaciones. (CIAT) No. 151.

Rodríguez, H., Hechevarría, I., Rodrígue, C. A., & Rivera, M. M. (2003). Propagación in vitro de Artemisia absinthium L. en Cuba. Revista Cubana de Plantas Medicinales, 8(1), 0-0.

Sigarroa-Rieche, A. K., & García-Delgado, C. L. (2011). Establecimiento y multiplicación in vitro de mora de castilla (Rubus glaucus Benth.) variedad sin espinas, mediante ápices meristemáticos. Acta agronómica, 60(4), 347-354.

Solis, R., Olivera, J., & La Rosa, R. S. (2011). Propagación in vitro de Carica papaya var. PTM-331 a partir de meristemos apicales. Revista peruana de biología, 18(3), 343-348.

Taborga, A. D. A., León, R. M., Poma, D. V., García, V., & Rojas, J. J. V. (2016). Desarrollo de un protocolo para el establecimiento in vitro de Kewiña (Polylepis besseri, Hieron.) a partir de yemas apicales. Revista Científica de Investigación Info-Iniaf, 1(8), 43-49.

Torres, L. A., & Suarez, I. E. (2013). Propagación in vitro de Acacia mangium Willd. Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial: BSAA, 11(1), 81-87.

Uribe, M. & Cifuentes, L. (2004). Aplicación de técnicas de cultivo in vitro en la propagación de Legrandia concinna. Bosque (Valdivia), 25(1), 129-135.

Vega, C. K., Villegas, C. G., Rocabado, P. A., Quezada, J. A., López, M. Y., & Quevedo, A. W. (2018). Biología reproductiva de tres especies de Polylepis (P. neglecta, P. incarum y P. pacensis), con énfasis en su comportamiento germinativo. Ecología Austral, 28(1-bis), 310-324.

Vega, C., Bermejo-Franco, J. C., & Villegas-Alvarado, G. (2007). Propagación masiva de Polylepis tomentella Weddell ssp. nana mediante técnicas de cultivo in vitro. Ecología en Bolivia, 42(2), 102-120.

Villa, R., & Arbeláez, L. M. (2019). Micropropagación in vitro de rosa rosa sp. a partir de yemas axilares y respuesta callogénica. Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biologicas, 1(31), 10-17.

Zapata, F., Dourojeanni, P., Gagliardi, G., & Cordero, D. (2012). El Clima Cambia, Cambia Tú También. Adaptación al cambio climático en comunidades locales del Perú. Lima, Sociedad Peruana de Derecho Ambiental.

Zutta, B. R., Rundel, P. W., Saatchi, S., Casana, J. D., Gauthier, P., Soto, A. & Buermann, W. (2012). Prediciendo la distribución de Polylepis: bosques Andinos vulnerables y cada vez más importantes. Revista Peruana de Biología, 19(2), 205-212.




DOI: http://dx.doi.org/10.17268/manglar.2021.028

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Licencia de Creative Commons Manglarrevista de la Universidad Nacional de Tumbes, publica sus contenidos bajo licencia Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0.
Dirección Av. Universitaria s/n Pampa Grande - Tumbes - Ciudad Universitaria. Universidad Nacional de Tumbes, Tumbes, Perú.
ISSN: 2414-1046 (electrónico); 1816-7667 (impreso)
DOI: 10.17268/manglar
Contactorevistamanglar@untumbes.edu.pe